- Код статьи
- S3034552925040041-1
- DOI
- 10.7868/S3034552925040041
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 61 / Номер выпуска 4
- Страницы
- 251-259
- Аннотация
- На сегодняшний день в усложняющейся техногенной обстановке особенную актуальность приобретает изучение влияния переменных магнитных полей (ПМП) на биологические объекты. Наиболее чувствительной к действию магнитных полей является нервная система. С привлечением моделей на с разным содержанием криптохрома (CRY) (универсального фото- и магнитосенсора) в тесте условно-рефлекторного подавления ухаживания изучены пути и механизмы воздействия слабых ПМП на память и когнитивные функции. В результате исследования обнаружен стойкий повторяющийся эффект изменения поведения дрозофилы. Показано, что на свету слабое ПМП стимулирует формирование среднесрочной памяти у мутанта по гену CG1848 для LIM-киназы 1 , для которого характерно нарушение процессов обучения и формирования памятного следа как в нормальных условиях, так и при воздействии слабого ПМП в темноте. Основной мишенью воздействия слабого ПМП является CRY, поскольку получены данные о дифференциальном эффекте света и темноты на формирование среднесрочной памяти. Выявлена роль ПМП в когнитивных процессах. Участие CRY и ПМП в процессах формирования памяти позволит разрабатывать эффективные способы неинвазивной терапии нейропатологий.
- Ключевые слова
- слабое переменное магнитное поле криптохром обучение среднесрочная память дрозофила
- Дата публикации
- 31.08.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 23
Библиография
- 1. Jain N, Shedpure M, Tikariha R, Karanjgaonkar P, Ratre M, Agriwanshi S (2015) Magnetic field effect on biological systems. Indian Journal of Life Sciences 5(1): 135–151.
- 2. Rivas M, Martinez-Garcia M (2024) A physical framework to study the effect of magnetic fields on the spike-time coding. Biomedical Engineering and Computational Biology 15: 1–14. https://doi.org/10.1177/11795972241272380
- 3. Щеголев БФ, Сурма СВ, Попова НН, Клячко ДС (2024) Восстановление потенциала действия на первом слуховом нейроне слабым магнитным полем при тугоухости. Интегративная физиология 5(4): 357–364. https://doi.org/10.3390/2687-1270-2024-5-4-357-364
- 4. Reiter LT, Potocki L, Chien S, Gribskov M, Bier E (2001) A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophila melanogaster. Genome Res. 11(6): 1114–1125. https://doi.org/10.1101/gr.169101
- 5. Kawasaki H, Okano H, Ishiwatari H, Kishi T, Ishida N (2023) A role of cryptochrome for magnetic field-dependent improvement of sleep quality, lifespan, and motor function in Drosophila. Genes Cells 28(7): 496–502. https://doi.org/10.1111/gtc.13030
- 6. Dimitrijevic D, Savić T, Andelković M, Prolić Z, Janac B (2014) Extremely low frequency magnetic field (50 Hz, 0.5 mT) modifies fitness components and locomotor activity of Drosophila subobscura. Int J Radiat Biol. 90(5): 337–343. https://doi.org/10.3109/09553002.2014.888105.
- 7. Zmajkowski D, Petković B, Pavlović-Lučić S, Prolić Z, Andelković M, Savić T (2017) Different responses of Drosophila subobscura isofemale lines to extremely low frequency magnetic field (50 Hz, 0.5 mT): fitness components and locomotor activity. Int J Radiat Biol 93(5): 544–552. https://doi.org/10.1080/09553002.2017.1268281
- 8. Fedele G, Edwards MD, Bhutani S, Hares JM, Murbach M, Green EM, Dissel S, Hastings MH, Rosato E, Kyriacou CP (2014) Genetic analysis of circadian responses to low frequency electromagnetic fields in Drosophila melanogaster. PLOS Genetics 10(12): e1004804. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1004804
- 9. Фрайкин ГЯ (2022) Фотосенсорные и сигнальные свойства криптокромов. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология 77(2): 65–75. [Frailkin GY (2022) Photosensory and signaling properties of cryptochromes. Vestnik Moskowskogo universitetta. Seriya 16. Biologiya 77(2): 65–75. (In Russ.)]
- 10. Zhuravlev AV, Polev D, Medvedeva AV, Savvatceva-Popova EV (2024) Whole-genome and poly(A)+transcriptome analysis of the Drosophila mutant agn with cognitive dysfunctions. Int. J. Mol.Sci. 25: 9891. https://doi.org/10.3390/jjms25189891
- 11. Damulewicz M, Mazzotta GM (2020) One actor, multiple roles: The performances of cryptochrome in Drosophila. Front Physiol. 11: 99. https://doi.org/10.3389/fphys.2020.00099
- 12. Nikitina EA, Medvedeva AV, Zakharov GA, Savvatceva-Popova EV (2014) The Drosophila agnostic locus: involvement into formation of cognitive defects in William's syndrome. Acta Naturae 6(2): 53–61. https://doi.org/10.32607/20758251-2014-6-2-53-61
- 13. Misu S, Takebayashi M, Kei M (2017) Nuclear actin in development and transcriptional reprogramming. Front Genet. 8: 27. https://doi.org/10.3389/fgene.2017.00027
- 14. Nikitina EA, Kaminskaya AN, Molotkov DA, Popov AV, Savvatceva-Popova EV (2014) Effect of heat shock on courtship behavior, sound production, and learning in comparison with the brain content of LLMK1 in Drosophila melanogaster males with altered structure of the limk1 gene. Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology 50(2): 154–166. https://doi.org/10.1134/S0022093014020082
- 15. Vasilieva SA, Tokmacheva EV, Medvedeva AV, Ermilova AA, Nikitina EA, Shchegolev BF, Surma SV, Savvatceva-Popova EV (2020) The role of parental origin of chromosomes in the instability of the somatic genome in Drosophila brain cells and memory trace formation in norm and stress. Cell and Tissue Biology 14(3): 178–189. https://doi.org/10.1134/S1990519X20030074
- 16. Huang W, Zong J, Zhang Y, Zhou Y, Zhang L, Wang Y, Shan Z, Xie Q, Li M, Pan S, Xiao Z (2024) The role of circadian rhythm in neurological diseases: A translational perspective. Aging Dis. 15(4): 1565–1587. https://doi.org/10.14336/AD.2023.0921
- 17. Namme JN, Begari AK, Takebayashi H (2021) Cofflin signaling in the CNS physiology and neurodegeneration. Int J Mol Sci. 22(19): 10727. https://doi.org/10.3390/jjms221910727
- 18. Ejima A, Smith BPC, Lucas C, van der Goes van Naters W, Miller CJ, Carlson JR, Levine JD, Griffith LC (2007) Generalization of courtship learning in Drosophila is mediated by cis-vaccenyl acetate. Curr Biol 17(7): 599–605. https://doi.org/10.1016/j.cub.2007.01.053
- 19. Kamyshev NG, Iliadi KG, Bragina JV (1999) Drosophila conditioned courtship: Two ways of testing memory. Learn. Mem. 6: 1–20.
- 20. Tokmacheva EV, Medvedeva AV, Shchegolev BF, Nikitina EA, Savvatceva-Popova EV (2024) Long-term memory: the role of light and learning in coping with stress in Drosophila melanogaster. Neurochemical Journal 18(4): 728–733. https://doi.org/10.1134/S1819712424700387
- 21. Thakur D, Hunt S, Tsou T, Petty M, Rodriguez JM, Montell C (2025) Control of odor sensation by light and cryptochrome in the Drosophila antenna. iScience 28(5): 112443. https://doi.org/10.1101/2024.12.12.628259
- 22. Inami S, Sakai T (2022) Circadian photoreceptors are required for light-dependent maintenance of long-term memory in Drosophila. Neurosci Res. 185: 62–66. https://doi.org/10.1016/j.neures.2022.09.003
- 23. Yin JCP, Cui E, Hardin PE, Zhou H (2023) Circadian disruption of memory consolidation in Drosophila. Frontiers in Systems Neuroscience 17: 1129152. https://doi.org/10.3389/fnsys.2023.1129152
- 24. De Almeida AJPO, De Oliveira JCPL, Da Silva Pontes LV, De Souza Júnior JF, Gonçalves TAF, Dantas SH, De Medeiros IA (2022) ROS: basic concepts, sources, cellular signaling, and its implications in aging pathways. Oxidative Med Cell Longev. 2022: 1225578. https://doi.org/10.1155/2022/1225578
- 25. Ferro E, Goirre L, Baldini E, Retta SF, Trabalzini L (2014) Ras GTPases are both regulators and effectors of redox agents. Methods Mol Biol. 1120: 55–74. https://doi.org/10.1007/978-1-62703-791-4_5
- 26. Hobbs GA, Zhou B, Cox AD, Campbell SL (2014) Rho GTPases, oxidation, and cell redox control. Small GTPases. 5: e28579. https://doi.org/10.4161/sgtp.28579
- 27. Tregub PP, Komleva YK, Kukla MV, Averchuk AS, Vetchinova AS, Rozanova NA, Illarioshkin SN, Salmina AB (2025) Brain plasticity and cell competition: Immediate early genes are the focus. Cells 14(2): 143. https://doi.org/10.3390/cells14020143
- 28. Ortega-de San Luis C, Ryan TJ (2022) Understanding the physical basis of memory: Molecular mechanisms of the engram. J. Biol. Chem. 298(5): 101866. https://doi.org/10.1016/j.jbc.2022.101866
- 29. Yoshii T, Todo T, Helfrich-Förster C (2008) Cryptochrome is present in the compound eyes and a subset of Drosophila's clock neurons. J Comp Neurol. 508(6): 952–966. https://doi.org/10.1002/cne.21702
- 30. Perzes P, Cahill ME (2012) Deconstructing signal transduction pathways that regulate the actin cytoskeleton in dendritic spines. Cytoskeleton 69: 426–441. https://doi.org/10.1002/cm.21015
- 31. Damulewicz M, Mazzotta GM, Sartori E, Sartori E, Costa R, Pyza EM (2017) Cryptochrome is a regulator of synaptic plasticity in the visual system of Drosophila melanogaster. Front Mol Neurosci. 10: 165. https://doi.org/10.3389/fnmol.2017.00165
- 32. Damulewicz M, Wózniacka O, Jasinska M, Pyza E (2020) CRY-dependent plasticity of tetrad presynaptic sites in the visual system of Drosophila at the morning peak of activity and sleep. Sci Rep. 10(1): 18161. https://doi.org/10.1038/s41598-020-74442-w
- 33. Ivanchenko M, Stanewsky R, Giebulowicz JM (2001) Circadian photoreception in Drosophila: functions of cryptochrome in peripheral and central clocks. J Biol Rhythms. 16(3): 205–215. https://doi.org/10.1177/074873040101600303
- 34. Li S, Wang Y, Wang F, Hu L-F, Liu C-F (2016) A new perspective for Parkinson's disease: Circadian rhythm. Neurosci Bull. 33(1): 62–72. https://doi.org/10.1007/s12264-016-0089-7